外源DNA导入宿主细胞的过程称为转化。重组DNA技术中，经常需要将质粒DNA转入大肠杆菌宿主细胞，以实现质粒DNA的保存、扩增或外源基因的表达。
大肠杆菌细胞在转化前，必须经过特殊处理制备成感受态细胞，以增加转化效率。感受态细胞的制备方法有多种，分别适用于不同的转化方法。实验室中常用氯化钙（CaCl 2 ）溶液制备大肠杆菌感受态细胞，然后使用42℃热冲击的方法进行质粒DNA或连接产物的转化。
利用冰冷的CaCl 2 溶液处理对数生长期的大肠杆菌细胞，可以使大肠杆菌的细胞膜通透性等方面发生变化，成为易于被外源DNA转化的感受态细胞。将大肠杆菌感受态细胞与质粒DNA混合均匀，可以使质粒DNA吸附在细胞表面，经过42℃的短暂热冲击，可以促使一部分DNA进入细胞内，完成对大肠杆菌细胞的转化。
这一转化方法的转化效率比较低，所以必须结合质粒DNA上携带的筛选标记对转化后得到的细胞进行筛选。一般最常用的筛选标记是抗生素抗性标记，被成功转化的细胞可以表达作为标记使用的抗生素抗性基因，从而在具有相应抗生素的培养基上生存下来。其他未被成功转化的细胞不具备对该抗生素的抗性，则不能在具有抗生素的培养基中存活。
本实验以pET32a-SmPR10质粒为例，将其转化进入大肠杆菌DH5α感受态细胞。由于pET32a质粒载体上携带有氨苄青霉素抗性基因，因此对转化后得到的细胞采用含氨苄青霉素的培养基筛选。只有成功被质粒转化的细胞才能表达氨苄青霉素抗性基因，从而在抗性培养基上生长，形成可见的白色菌斑。
如果使用其他质粒或连接产物DNA对大肠杆菌细胞进行转化，与本实验步骤类似，只是需要选择与所用质粒载体对应的正确筛选方法。